赛默飞细胞计数仪Invitrogen Countess 3 FL Automated Cell Counter操作指南
质保3年只换不修,厂家长沙实了个验仪器制造有限公司
一、概述
Invitrogen Countess 3 FL 自动细胞计数仪是赛默飞公司推出的第三代智能化细胞分析系统,结合了明场成像与多通道荧光检测技术,可实现快速、精确的细胞计数、活性分析与荧光标记检测。
该设备采用高分辨率CMOS成像、LED光源与智能识别算法,具有操作简便、检测速度快、数据输出多样化等优点,适用于细胞培养、药物筛选、转染实验及免疫研究等多种生物学领域。
本操作指南详细介绍从开机准备到结果导出的全流程规范,帮助科研人员高效、安全地使用该仪器,确保获得准确、可重复的检测结果。
二、操作前准备
1. 环境要求
操作温度:20°C–25°C(推荐)
相对湿度:30%–70%
避免阳光直射、强风或震动环境
仪器应放置在稳固、水平的实验台上,保持通风良好
2. 电源与设备检查
确认电源为220V ±10%,并配有稳压保护装置
检查仪器电源线、USB接口、网口是否连接牢固
确保样品槽、透镜及外壳表面无尘污
开机前应让仪器在实验室环境中静置10分钟,以防温差造成光学结露
3. 耗材与试剂准备
一次性细胞计数芯片(Countess Cell Counting Chamber Slide)
专用移液枪与无菌枪头
染色试剂(如Trypan Blue、Calcein-AM/PI、GFP荧光样品等)
PBS缓冲液或培养基
所有耗材需洁净无污染,避免交叉使用
三、仪器启动
按下仪器侧面电源键,等待系统自检完成
屏幕亮起后进入主界面(Main Menu),系统自动检测光源与摄像模块状态
若出现提示“System Ready”,说明仪器可正常使用
若显示“Calibration Required”或“Focus Error”,应执行自动校准(System Calibration)
四、软件界面介绍
Countess 3 FL配备7英寸高清触控屏,主界面包括以下功能模块:
Count:细胞计数模式入口
Fluorescence:荧光检测模式
Saved Results:历史结果与数据管理
Settings:系统设置与用户配置
Maintenance:校准与系统诊断
Export:数据导出与报告生成
触控操作灵敏,可通过滑动、点击完成所有设定;屏幕左上角显示当前检测模式与温度状态。
五、样品制备
样品制备是影响检测精度的重要步骤。
1. 样品浓度控制
推荐检测浓度为 1×10⁵–1×10⁷ cells/mL。
若浓度过高,应使用PBS稀释;过低则可适当离心浓缩。
2. 染色步骤(以台盼蓝为例)
取10 µL细胞悬液加入等体积0.4% Trypan Blue溶液;
混匀后静置2分钟,使死细胞充分染色;
使用移液枪取10 µL混合液加载到计数芯片的检测腔中。
对于荧光检测,可根据染料特性调整染色时间和比例,如使用Calcein-AM/PI时推荐5–10分钟反应。
3. 样品均匀性
在加载前应轻轻颠倒混匀,确保细胞均匀分布;避免气泡或沉降影响图像识别。
六、样品加载
打开计数芯片包装,确认清洁无刮痕
使用移液枪在芯片入口加入10 µL样品
确保样品沿毛细通道自动填充,不可用力压入
避免产生气泡或溢出;若有气泡,应重新制备样品
插入芯片至仪器样品舱底部,听到轻微“咔”声即表示放置到位
七、模式选择与设置
1. 明场计数模式(Bright Field)
点击主界面“Count”
选择样品类型(Suspension / Adherent)
设置检测参数(如对比度、细胞直径范围、聚团分割选项)
点击“Focus”启动自动聚焦
2. 荧光检测模式(Fluorescence)
点击“Fluorescence”
选择所需通道(Blue / Green / Red)
根据染料类型调整曝光时间与增益(系统默认自动优化)
可勾选“Overlay”选项以显示明场+荧光叠加图像
3. 双模式检测
Countess 3 FL支持明场与荧光同步采集。
在同一样品下,系统会自动完成两次成像并生成综合分析报告。
八、自动聚焦与图像采集
1. 自动聚焦
仪器内置快速聚焦算法,用户点击“Auto Focus”后系统会在2秒内完成焦点定位。
若样品较稀或光照过强,可使用“Manual Fine Tune”进行微调。
2. 成像与识别
聚焦完成后点击“Capture”,系统将自动采集图像并启动智能识别:
识别细胞边界与数量
区分活细胞与死细胞
计算平均直径与分布曲线
生成直方图与统计数据
3. 检测时间
单样品检测约需8–12秒,荧光模式略延长至12–15秒。
九、结果查看与分析
检测完成后,屏幕自动显示以下信息:
总细胞数(Total Cells/mL)
活细胞数(Viable Cells/mL)
死细胞数(Non-viable Cells/mL)
活性百分比(Viability %)
平均直径与分布范围
荧光阳性比例(若开启荧光模式)
用户可通过点击“Graph”查看细胞直径分布直方图或荧光强度曲线。
结果验证
若结果异常(如细胞数过高或活性过低),应重新检查样品混匀状态与芯片是否充满。
十、数据保存与导出
1. 数据保存
检测结束后点击“Save Result”:
输入样品名称、操作者、日期与备注;
系统自动保存至内置存储器(128 GB SSD)。
2. 数据导出
在“Export”菜单中可选择导出格式:
PDF:完整报告,含图像与图表
CSV/XLSX:原始数据格式,便于统计分析
TIFF/JPEG:图像文件,用于论文或记录
3. 导出路径
支持以下方式:
USB外接存储设备
局域网(LAN)共享
Thermo Fisher Connect 云端同步
数据导出速度约80 MB/s,可在3秒内完成报告输出。
十一、校准与性能检查
1. 自动校准
每次开机后仪器自动执行光源与传感器校准。
若检测过程中出现“Calibration Required”提示,可手动进入“Maintenance → Calibration”执行。
2. 荧光通道校准
建议每半年使用标准荧光微球进行通道验证:
插入标准样品
启动“Fluorescence Calibration”程序
系统自动调整曝光时间与通道增益,确保信号一致性
3. 聚焦精度验证
可使用标准细胞样本检测,检查成像清晰度与焦点准确性。
十二、清洁与关机
1. 清洁流程
取出芯片并丢弃至生物废物容器
用无尘布蘸70%乙醇擦拭样品舱
不可使用丙酮、氨水等腐蚀性清洁剂
擦拭触控屏与外壳,保持干燥洁净
2. 关机步骤
点击主界面右上角“Power Off”;
系统提示“Shutting Down”,完成数据保存后自动断电;
关闭电源按钮,拔下插头(如长时间不使用)。
3. 每日维护建议
清洁光学窗口与芯片槽
检查通风口是否堵塞
记录当天使用情况与维护状态
十三、操作安全要点
避免在仪器运行时拔插USB或网络连接;
不得将液体直接滴入仪器内部;
使用官方认证的计数芯片和试剂;
处理荧光样品时佩戴防护手套,避免荧光染料接触皮肤;
若仪器出现高温警告或异常声音,应立即停止操作并联系技术支持。
十四、常见问题与解决方案
| 问题 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 图像模糊 | 聚焦偏移或窗口污染 | 重新聚焦或清洁窗口 |
| 无法识别细胞 | 样品浓度过低或光照不足 | 调整浓度或增加曝光 |
| 荧光信号弱 | 染料老化或曝光设置不当 | 更换染料或优化通道设置 |
| 检测中断 | 芯片未插紧 | 重新插入并确保到位 |
| 数据无法保存 | 存储空间不足 | 删除旧文件或插入USB |
| 屏幕无响应 | 静电或系统卡顿 | 断电重启后恢复操作 |
十五、使用技巧与效率提升
批量检测模式:
可连续检测多个样品,系统自动编号并保存,适合高通量实验。快速模板设置:
在“Settings → Preset Templates”中可预设常用参数,一键加载。荧光叠加分析:
启用“Overlay”功能可在明场与荧光图像上进行信号共定位分析。自动报告生成:
检测完成后系统自动生成完整实验报告,减少人工统计时间。云端同步功能:
启用Thermo Fisher Connect后可直接上传结果,便于团队共享。
十六、维护周期与管理建议
| 维护类型 | 周期 | 内容 |
|---|---|---|
| 日常维护 | 每天 | 清洁样品舱与外壳、关闭系统 |
| 每周维护 | 每周 | 检查光学窗口与滤光片清洁度 |
| 每月维护 | 每月 | 检查散热口、执行系统诊断 |
| 半年校准 | 每6个月 | 荧光通道与聚焦系统校准 |
| 年度维护 | 每年 | 光源强度检测与硬件检修 |
所有维护记录应登记在《仪器使用与维护日志》中,以便追溯与质量管理。
十七、操作注意事项
仪器运行时禁止震动或移动;
不可在极端温湿度环境下使用;
检测结束后应立即移除芯片,防止样品干固;
若长时间不使用,应关闭电源并加盖防尘罩;
软件更新后需重新校准光源与传感器;
操作过程中保持双手清洁干燥,避免触控屏误触。


