赛默飞荧光定量PCR仪QuantStudio 5多重检测功能
一、概述
多重检测(Multiplex Real-Time PCR)是指在同一反应体系中同时扩增并检测多个不同靶标基因,通过不同荧光通道区分检测信号的技术。该方法能显著提高样品检测效率、节约试剂成本、减少实验误差,并在临床病原体检测、基因表达谱分析、SNP分型及多指标筛查等领域得到广泛应用。
赛默飞QuantStudio 5荧光定量PCR仪凭借其先进的多通道光学系统、高分辨滤光技术与智能分析算法,具备强大的多重检测能力,可在单个反应中稳定区分多达5种荧光信号,实现多个基因或样本的同步检测与分析。
二、QuantStudio 5多重检测技术原理
1. 光学系统基础
QuantStudio 5采用高性能LED激发光源与冷却型CCD检测器的组合。系统通过多波段激发与多层滤光分离,实现多种荧光染料的独立检测。
激发源:宽谱LED阵列,可覆盖400–700 nm范围;
检测器:高灵敏度CCD,可同时采集五个通道信号;
滤光模块:专用光谱分离器与干涉滤光片,实现荧光信号高分辨检测。
该设计有效避免通道间信号串扰,使多重检测的荧光识别具有高精度与低噪声。
2. 多重检测原理
在多重体系中,每个靶标基因使用不同荧光标记探针(或染料),例如:
FAM通道 → 靶标A
VIC通道 → 靶标B
ROX通道 → 靶标C
Cy5通道 → 靶标D
QuantStudio 5通过光学滤波器分别检测不同波长的发射光信号,并实时记录荧光变化,从而同步获得多个靶标的扩增曲线。
3. 光谱解混(Spectral Deconvolution)
多重检测中,不同染料光谱可能重叠。QuantStudio 5采用光谱解混算法,将每个检测通道的复合信号分离为独立荧光分量。
算法利用预设的染料光谱校准文件(Spectral Calibration File)进行矩阵求解,计算出各染料真实信号强度,实现高精度的多通道区分。
三、QuantStudio 5多重检测系统配置
1. 通道与染料对应表
| 通道编号 | 激发/发射波长(nm) | 推荐荧光染料 | 常见用途 |
|---|---|---|---|
| Channel 1 | 470 / 520 | FAM, SYBR Green | 目标基因或高敏标记 |
| Channel 2 | 530 / 555 | VIC, HEX | 内参或第二靶标 |
| Channel 3 | 575 / 610 | ROX | 被动参照或第三靶标 |
| Channel 4 | 640 / 670 | Cy5 | 病原体检测或特殊标记 |
| Channel 5 | 680 / 720 | TAMRA, Quasar 705 | 高级多重实验备用通道 |
QuantStudio 5最多可实现五通道并行检测,每个通道均可独立采集荧光信号并在软件中单独分析。
2. 光谱校准要求
在进行多重检测前需执行光谱校准,以建立染料的标准光谱模板。
校准步骤:
使用官方校准板(Spectral Calibration Plate);
选择所用荧光染料;
系统自动采集光谱并生成校准文件;
校准数据保存后即可长期使用。
四、多重检测实验设计原则
多重qPCR实验设计的核心在于体系兼容性、引物特异性与探针光谱匹配。
1. 引物与探针设计
每个靶标需使用特异性引物与探针组合;
引物长度18–25 bp,GC含量40–60%;
探针长度18–30 bp,Tm值较引物高5–10°C;
避免互补结构与二聚体形成;
确保不同引物间无交叉反应。
2. 荧光染料选择
染料应满足以下条件:
光谱间隔大,重叠小;
信号强度平衡;
与仪器通道兼容。
推荐组合:FAM + VIC + ROX + Cy5。
3. 探针与通道配置
每个探针的报告染料应分配至不同通道,淬灭剂可使用BHQ1、BHQ2或TAMRA以提高信号对比度。
4. 扩增体系配比
为避免竞争扩增,推荐体系优化如下(20 μL体系):
| 组分 | 体积(μL) | 最终浓度 | 说明 |
|---|---|---|---|
| 2× Multiplex Master Mix | 10.0 | 1× | 含优化Mg²⁺与酶体系 |
| 引物(每对) | 各0.3 | 0.3 μM | 保持平衡浓度 |
| 探针(每条) | 各0.2 | 0.2 μM | 不宜过高 |
| 模板 | 1.5 | 5–50 ng | 保证特异扩增 |
| 无核酸水 | 补足至20 μL | — | 保持总体积 |
五、多重检测的热循环程序
QuantStudio 5为多重检测提供专用循环模式,兼顾多靶标的扩增效率。
典型程序如下:
初始变性:95°C 10 min
循环阶段(40次):
95°C 15 s
60°C 1 min(荧光采集)
可根据探针Tm值微调退火温度(±2°C)。
若靶标间Tm差异较大,可采用两步法程序。
六、软件操作与通道配置步骤
1. 建立实验文件
打开QuantStudio Design & Analysis Software,选择“New Experiment”,在“Experiment Type”中选取“Standard Curve”或“Quantification”。
2. 定义靶标与通道
在“Plate Setup”界面:
点击“Add Target”;
输入靶标名称;
选择对应报告染料与通道(如FAM、VIC、ROX、Cy5等);
为每个样品分配对应靶标。
3. 设置采集模式
在“Data Collection”选项中勾选所有使用通道,并确保采集阶段选择“Anneal/Extend”。
4. 运行与采集
加载样品后点击“Start Run”,仪器将在每循环采集全部通道信号,并自动区分数据。
七、数据分析与结果判读
QuantStudio 5分析软件可同时显示多个通道的扩增曲线与结果表格。
1. 扩增曲线
每个靶标独立显示曲线(颜色区分通道)。系统自动计算基线与阈值,生成各靶标的Ct值。
2. 结果表格
报告包含以下内容:
样品名称;
通道与靶标;
Ct值;
ΔRn曲线幅度;
扩增效率;
是否检测阳性。
3. 多重定量分析
在“Analysis Type”中选择“Quantification”模式,系统将自动建立各靶标的标准曲线并输出拷贝数结果。
4. 颜色聚类图
若为基因分型实验,软件会绘制通道间的二维散点图,用以区分不同等位基因。
八、多重检测实验优化策略
多重体系的优化重点在于通道间平衡与扩增兼容性。
1. 优化步骤
先单靶标验证各引物与探针的效率;
检查扩增效率是否接近100%;
在多重体系中逐步加入第二、第三靶标;
若出现竞争扩增,降低高效靶标引物浓度;
观察Ct值变化,确保各靶标差异<0.5。
2. 通道平衡调节
不同染料信号强度不同,系统可通过“Normalization”模块自动调整荧光增益。
若FAM信号过强而Cy5信号弱,可适当提高Cy5探针浓度或调整光学校准参数。
3. 抑制竞争效应
模板量过高或扩增效率差异大可能造成靶标竞争。
解决方法:
降低模板总量;
优化Mg²⁺浓度;
平衡各引物浓度。
4. 信号交叉干扰控制
确保荧光染料组合具有良好光谱分离度,并定期执行光学校准。
九、常见问题与解决方案
| 问题 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 某通道无信号 | 探针降解或通道未启用 | 更换探针或重新勾选通道 |
| 通道信号重叠 | 光谱未校准或染料兼容性差 | 执行光谱校准,优化染料组合 |
| 某靶标Ct值偏高 | 引物效率低或竞争扩增 | 调整引物浓度或退火温度 |
| 背景信号高 | 荧光污染或封板不严 | 更换封膜,清洁样品区 |
| 曲线不对称 | 基线设定不当 | 重新调整基线区间 |
| 不同孔通道信号差异大 | 光学路径污染或反应体系不均 | 清洁光学窗并重新混匀体系 |
十、应用领域
1. 病原体联合检测
可在单管中检测多种病毒或细菌,如流感A/B、RSV、腺病毒等,缩短检测周期并节省样品。
2. 肿瘤标志物多基因检测
在肿瘤分子诊断中,通过多重qPCR同时检测多个突变位点(如EGFR、KRAS)。
3. 基因表达谱研究
可同步检测多个功能相关基因的表达水平,提高实验通量。
4. 食品安全与环境监测
实现多种污染物或致病菌的并行检测,提升筛查效率。
十一、性能优势
高灵敏度与准确性
光谱解混算法确保不同通道信号无交叉干扰。五通道并行检测
实现单反应检测多达五个靶标,提升通量。自动数据分析
软件可自动分通道计算Ct值、绘制标准曲线并生成报告。兼容多体系
支持SYBR Green、TaqMan及Custom Probe体系。高重复性
通道间Ct值标准差通常小于0.3,保证结果一致性。
十二、质量控制与验证
1. 校准验证
定期进行光学校准与温控校准;
确认通道信号强度一致。
2. 阴阳性对照
每个实验应包含:
NTC(无模板对照);
阳性对照;
内参控制。
3. 数据一致性检测
分析重复样本间Ct差异,标准差≤0.3为合格。
4. 软件版本同步
使用最新版本软件以获取最佳光谱分离算法。
十三、实验数据展示与报告
QuantStudio 5软件支持多重检测数据的可视化展示与自动报告生成。
报告内容包括:
各通道扩增曲线;
多靶标Ct表格;
相对表达分析(ΔΔCt);
基因分型聚类图;
实验摘要、仪器编号与操作者信息。
报告可导出为PDF、Excel或图像格式,用于科研发表或临床审核。
十四、优化实例
在一次四重检测实验中,研究者同时检测四种病原体:
FAM通道:Influenza A
VIC通道:Influenza B
ROX通道:RSV
Cy5通道:Adenovirus
通过逐步优化引物浓度和平衡光谱响应,最终各靶标扩增效率95–105%,Ct差异小于0.4,重复性优异。
该结果充分验证了QuantStudio 5的多通道检测稳定性与高通量特性。


