浙江栢塑信息技术有限公司

赛默飞荧光定量PCR仪QuantStudio 3反应体系

QuantStudio 3实时荧光定量PCR仪是Thermo Fisher Scientific推出的中通量实时定量PCR系统,其检测结果的准确性与重复性不仅依赖仪器的光学与温控性能,更取决于反应体系的科学配置。反应体系(Reaction System)是PCR扩增反应的核心,包括模板、引物、探针、聚合酶、dNTPs、缓冲液及荧光检测组分等。

一、反应体系概述

QuantStudio 3实时荧光定量PCR仪是Thermo Fisher Scientific推出的中通量实时定量PCR系统,其检测结果的准确性与重复性不仅依赖仪器的光学与温控性能,更取决于反应体系的科学配置。反应体系(Reaction System)是PCR扩增反应的核心,包括模板、引物、探针、聚合酶、dNTPs、缓冲液及荧光检测组分等。

一个优化的反应体系能确保扩增效率稳定、Ct值准确、熔解曲线单峰清晰、无非特异性产物。QuantStudio 3支持多种化学体系,如SYBR Green染料法与TaqMan探针法,并兼容多重荧光检测反应。


二、反应体系组成

标准的QuantStudio 3 PCR反应体系体积通常为20 μL,包括以下成分:

成分功能说明典型终浓度
模板DNA/cDNA提供扩增模板1–100 ng(DNA)或相当于10–100 ng RNA反转录产物
正向引物(Forward Primer)特异性识别靶序列0.2–0.5 μM
反向引物(Reverse Primer)与正向引物配对形成扩增区间0.2–0.5 μM
探针(TaqMan法)提供荧光信号检测0.1–0.25 μM
dNTP混合物合成DNA的基本原料200 μM(每种碱基)
Taq DNA聚合酶催化DNA链延伸反应0.5–1 U/反应
MgCl₂或MgSO₄聚合酶活性辅助因子1.5–3.0 mM
反应缓冲液维持体系pH与离子强度
荧光染料(SYBR Green)检测双链DNA信号按试剂盒说明配比
无核酸酶水补足体系总体积补至20 μL

反应体系可根据实验需求调整,特别是在检测灵敏度、特异性或多重PCR应用时需精细优化。


三、QuantStudio 3支持的反应化学体系

1. SYBR Green法

SYBR Green为非特异性双链DNA结合荧光染料,随扩增产物累积而发光。其优点为操作简便、成本低、适用范围广;缺点是易受非特异扩增和引物二聚体影响。

关键参数:

  • 退火温度:60°C为常用值;

  • 荧光采集:在延伸阶段采集信号;

  • 熔解曲线分析:扩增后升温至95°C以验证特异性。

适用场景:
基因表达分析、单靶基因定量、教育和教学实验。

2. TaqMan探针法

TaqMan探针通过5’端荧光基团与3’端淬灭基团形成闭合结构,仅在扩增过程中被Taq酶5’→3’外切酶活性切割时发光。信号特异性高、背景低,是QuantStudio 3的主流检测方式。

关键参数:

  • 探针终浓度:0.1–0.25 μM;

  • 反应体系中不需熔解曲线分析;

  • 支持多重荧光检测(FAM、VIC、ROX、Cy5)。

适用场景:
病原体检测、基因分型、突变筛查、病毒载量定量等高精度实验。

3. Multiplex多重反应体系

QuantStudio 3的光学系统可同时检测4个荧光通道,实现多靶标同管检测。要求引物探针间无交叉反应,荧光信号强度均衡。

优化建议:

  • 各探针染料间光谱差异≥30 nm;

  • 每对引物退火温度相差不超过2°C;

  • 建议总引物浓度不超过1 μM。


四、反应体系的配置原则

1. 模板量控制

模板量过高易导致非特异扩增、引物二聚体形成及Ct值偏低;过低则信号弱、检测灵敏度下降。定量实验建议模板浓度处于扩增线性范围内。

参考范围:

  • 基因组DNA:1–50 ng/反应;

  • cDNA:相当于1–100 ng RNA反转录产物;

  • 病毒RNA/DNA:10²–10⁶ copies/反应。

2. 引物设计

引物设计直接决定扩增效率与特异性。

  • 长度:18–25 bp;

  • GC含量:40–60%;

  • Tm值差不超过1°C;

  • 避免连续相同碱基>4个;

  • 产物长度:80–200 bp为宜。

推荐使用赛默飞提供的Primer ExpressOligoPerfect设计软件。

3. Mg²⁺浓度调节

Mg²⁺是Taq酶的辅因子,浓度影响酶活性与特异性。浓度过低反应不完全,过高则增加非特异扩增。优化范围一般在1.5–3.0 mM之间。

4. 酶体系选择

QuantStudio 3推荐使用Applied Biosystems™ Fast Advanced Master MixPowerUp™ SYBR Green Master Mix,具备高热稳定性和抗抑制能力。


五、反应体系的准备与操作步骤

1. 试剂准备

所有试剂应在冰上操作,避免反复冻融。各组分充分混匀后离心短暂收集液体,确保体积一致。

2. 配制主混合液(Master Mix)

Master Mix是反应体系的核心,含除模板外的所有组分,可有效减少移液误差与孔间差异。

示例(20 μL体系):

成分体积 (μL)
2×Master Mix10.0
正向引物 (10 μM)0.4
反向引物 (10 μM)0.4
探针 (10 μM)0.2
模板2.0
无核酸酶水7.0
总计20.0

混合后轻轻吹打或涡旋混匀,避免产生气泡。

3. 加样与板封

将反应液分装入96孔PCR板,每孔20 μL。

  • 使用多道移液器提高一致性;

  • 封膜应平整透明、无气泡;

  • 轻微离心确保液体均匀分布。

4. 运行程序设置

QuantStudio 3操作界面中设置标准热循环程序:

  • 95°C初始变性2分钟;

  • 40个循环:95°C 15秒、60°C 30秒;

  • 若为SYBR法,增加熔解曲线分析步骤(60–95°C)。


六、反应体系优化策略

1. 退火温度优化

退火温度影响特异性与扩增效率。可通过梯度PCR法确定最佳温度。建议从55°C至65°C范围内测试,以获得最清晰的扩增曲线和单一熔解峰。

2. 引物浓度优化

当出现非特异扩增或二聚体时,应适当降低引物浓度;若信号弱,可适度提高。

3. 探针浓度调整

在多重检测中,不同染料探针的荧光效率可能不同。可调节各探针浓度使信号强度相近,避免通道间信号失衡。

4. 反应体系体积调整

QuantStudio 3支持10–50 μL范围体系。减小体积可节约试剂但增加蒸发风险;增大体积有助于提高灵敏度,但需注意热传导均匀性。

5. 加入内参基因

对于相对定量分析,应同时扩增内参基因(如GAPDH、β-actin)以校正样品差异。


七、常见反应体系问题与解决

问题原因分析解决措施
Ct值偏高模板量不足、酶失活、Mg²⁺过低增加模板量或更换酶体系
无扩增曲线模板降解或引物错误检查模板完整性、重新设计引物
熔解曲线多峰非特异扩增或二聚体形成提高退火温度或降低引物浓度
曲线不平滑反应体系气泡或荧光信号不稳定离心反应板、重新封膜
Ct重复性差加样不均或移液误差使用Master Mix并校准移液器
背景高SYBR Green过量或污染稀释染料、更换耗材
通道信号弱探针浓度过低或染料光漂白提高探针浓度、避光保存

八、反应体系质量控制与验证

QuantStudio 3具备强大的数据监控与分析功能,可实时评估反应体系质量。

  1. 基线稳定性检查:系统自动校正前10个循环的荧光信号,若波动过大说明体系不均。

  2. 熔解曲线验证:单一峰值表示扩增特异;多峰则需重新优化。

  3. 标准曲线分析:通过R²与扩增效率判断体系可靠性(理想效率90–110%,R²≥0.99)。

  4. 阴阳性对照:阴性孔无曲线,阳性孔Ct稳定,证明体系无污染。


九、反应体系稳定性与储存

1. 试剂保存

  • SYBR Green或TaqMan试剂盒需在–20°C保存;

  • 避免反复冻融,使用时应在冰上操作;

  • 荧光探针避光保存。

2. 混合液稳定性

  • 配制完成后建议立即上机;

  • 若需短暂等待,置于4°C且不超过4小时;

  • 长期实验可预配Master Mix并分装保存。

3. 环境要求

  • 实验区分为样品准备区与扩增区;

  • 使用过滤吸头防止气溶胶污染;

  • 保持台面清洁,避免金属离子干扰。


十、QuantStudio 3专用反应试剂体系

Thermo Fisher为QuantStudio系列开发了多款专用Master Mix:

  1. PowerUp™ SYBR Green Master Mix

    • 适用于基因表达与定量分析;

    • 含ROX参比染料,稳定性高;

    • 可在Fast模式下运行(每循环30秒内完成)。

  2. TaqMan™ Fast Advanced Master Mix

    • 适用于TaqMan探针法;

    • 抗抑制能力强,可直接检测复杂样品;

    • 支持多重PCR实验。

  3. LunaScript™ RT SuperMix(反转录体系)

    • 用于RNA反转录生成cDNA;

    • 与QuantStudio 3兼容性好,产物纯度高。

使用官方配方可减少体系优化工作量,确保数据一致性。


十一、应用实例

1. 基因表达定量分析

在定量检测目标基因表达水平时,体系中包含目标引物与内参引物两组反应。通过ΔΔCt法计算相对表达倍数,体系中使用SYBR Green Master Mix,退火温度设置为60°C。

2. 病毒载量检测

采用TaqMan探针体系,每孔加入2 μL模板,总体系20 μL。标准曲线以质粒DNA稀释梯度建立,最低检测限可达10 copies。

3. SNP基因分型

多重探针反应体系中设置FAM/VIC双通道探针,体系优化后信号区分度明显。通过QuantStudio 3分析模块自动识别不同基因型。


十二、反应体系在不同模式下的调节

QuantStudio 3支持多种运行模式:

  • Standard模式:适合常规体系,反应时间约90分钟;

  • Fast模式:适合快速酶体系,反应时间可缩短至35分钟;

  • Custom模式:用户自定义程序,适合复杂反应或多步热循环实验。

在Fast模式下,体系体积建议不超过20 μL,需使用专用快速Master Mix。


十三、优化实验体系的经验总结

  1. 模板浓度保持在检测范围中间区间,避免过稀或过浓;

  2. 退火温度和Mg²⁺浓度应联合优化;

  3. 多重体系中引物浓度分配需平衡;

  4. 扩增曲线应平滑、指数期明显、平台期稳定;

  5. 定期检查试剂批次差异,避免体系不稳定。

通过上述策略可显著提升QuantStudio 3反应体系的重复性与信噪比。