博日实时荧光定量pcr仪FQD-16A应用案例
时间:2025-08-27

一、引言

博日 FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪在科研、医学诊断、食品安全、环境监测等多个领域得到广泛应用。实时荧光定量 PCR(qPCR)技术因其高灵敏度、高特异性和高精度,被广泛应用于 基因表达分析、病原体检测、基因突变检测、转基因检测 等方面。FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪结合高效的温控系统和精准的荧光检测系统,为用户提供了可靠的实验支持。

本篇将介绍博日 FQD-16A 在多个实际应用中的成功案例,包括基因表达分析、病原体检测、基因突变检测和转基因检测等,展示 FQD-16A 在各领域的应用价值和技术优势。


二、应用案例一:基因表达分析

1. 实验背景

基因表达分析是现代分子生物学研究中的重要内容,常用于研究不同环境条件或疾病状态下基因的表达变化。实时荧光定量 PCR(qPCR)因其高灵敏度和精确度,被广泛应用于基因表达定量研究。

本案例通过使用博日 FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪,研究了 某种植物在不同温度下对特定基因表达的响应

2. 实验设计

  • 目标基因:植物中的抗逆基因。

  • 内参基因:使用 GAPDH 作为内参基因,以便进行相对定量分析

  • 样品类型:提取自不同温度处理下的植物叶片样本。

  • 实验方法:使用 ΔΔCt 方法 进行相对定量分析。

反应体系配置(20 μL)

组分用量
2× Master Mix10 μL
上游引物(10 μM)0.4 μL
下游引物(10 μM)0.4 μL
模板 DNA1–2 μL
无核酸酶水补足至 20 μL
  • 温度程序设置

    • 预变性:95℃,3 分钟

    • 循环:95℃,10 秒;60℃,30 秒(采集荧光信号),共 40 次循环

    • 延伸:72℃,30 秒

3. 实验过程

  • 提取植物叶片中的总 RNA,使用反转录试剂合成 cDNA。

  • 配置 PCR 反应体系,确保每个样本的反应体系准确无误。

  • 在 FQD-16A 上进行 PCR 扩增,设置程序参数,实时监测扩增曲线和熔解曲线。

  • 根据扩增曲线计算 Ct 值,使用 ΔΔCt 方法进行定量分析,比较不同温度处理下基因的相对表达量。

4. 结果分析

通过 qPCR 实验,FQD-16A 生成了清晰的扩增曲线,所有样品的 Ct 值具有较高的重复性。实验结果表明,在较低温度处理下,抗逆基因的表达量显著增加,与对照组相比表现出更高的表达水平。

  • 标准曲线法:用于验证实验数据的准确性,标准曲线呈现出线性关系,符合预期。

  • 熔解曲线分析:显示出单一的熔解峰,表明扩增产物的特异性良好。

5. 优化与结论

通过该实验,FQD-16A 展现了在基因表达分析中的高效能。若出现非特异性扩增,可以通过优化引物设计、调整退火温度来提高特异性。此外,增加模板浓度和优化反应体系也有助于提高实验的灵敏度和稳定性。


三、应用案例二:病原体检测

1. 实验背景

病原体检测是公共卫生领域的重要任务,尤其是针对快速传播的病毒、细菌或真菌等致病微生物的早期检测。实时荧光定量 PCR 技术由于其高灵敏度,已广泛用于病毒载量检测、细菌感染诊断等领域。

本案例展示了博日 FQD-16A 在 新型冠状病毒(SARS-CoV-2) 检测中的应用,通过定量 PCR 检测患者样本中的病毒 RNA。

2. 实验设计

  • 目标基因:SARS-CoV-2 的 N 基因

  • 内参基因:使用人类的 GAPDH 基因 作为内参。

  • 样品类型:采集自疑似感染者的咽拭子样本。

  • 实验方法:采用 TaqMan 探针法 进行定量分析。

反应体系配置(20 μL)

组分用量
2× Master Mix10 μL
N 基因引物(10 μM)0.4 μL
GAPDH 引物(10 μM)0.4 μL
TaqMan 探针(10 μM)0.4 μL
模板 RNA1–2 μL
无核酸酶水补足至 20 μL
  • 温度程序设置

    • 预变性:95℃,3 分钟

    • 循环:95℃,10 秒;60℃,30 秒,40 次循环

    • 延伸:72℃,30 秒

3. 实验过程

  • 提取患者样本中的 RNA,使用反转录试剂合成 cDNA。

  • 配置 PCR 反应体系,将样品添加到反应管中。

  • 在 FQD-16A 上设置实验程序,启动 PCR 扩增并实时监测荧光信号。

  • 根据 Ct 值和标准曲线法,定量样本中 SARS-CoV-2 的病毒载量。

4. 结果分析

实验结果显示 SARS-CoV-2 的 N 基因在患者样本中的表达量显著,大部分患者的 Ct 值低,表明病毒载量较高。通过比较对照组和实验组的 Ct 值,进一步确认了患者样本的病毒感染情况。

  • 标准曲线法:验证了实验数据的准确性,并用标准曲线计算了病毒的拷贝数。

  • 熔解曲线分析:显示所有扩增产物均为单一峰,表明扩增产物特异性良好。

5. 优化与结论

FQD-16A 以其高灵敏度和准确性,成功检测到 SARS-CoV-2 的病毒载量。通过优化引物设计、调整 PCR 条件等方法,能够进一步提高病毒检测的灵敏度。


四、应用案例三:基因突变检测

1. 实验背景

基因突变检测在遗传学研究、癌症诊断以及药物研发中起着重要作用。通过检测特定基因的突变类型,能够判断疾病的发生与发展机制。本案例展示了博日 FQD-16A 在 KRAS 基因突变检测 中的应用,KRAS 基因突变是癌症研究中的重要标志之一。

2. 实验设计

  • 目标基因:KRAS 基因的 G12V 突变位点

  • 内参基因:使用 β-Actin 作为内参基因。

  • 样品类型:癌症患者的外周血样本。

  • 实验方法:采用 定性 PCR 方法,使用突变特异性引物进行检测。

反应体系配置(20 μL)

组分用量
2× Master Mix10 μL
G12V 突变引物(10 μM)0.4 μL
β-Actin 引物(10 μM)0.4 μL
模板 DNA1–2 μL
无核酸酶水补足至 20 μL
  • 温度程序设置

    • 预变性:95℃,3 分钟

    • 循环:95℃,10 秒;60℃,30 秒,40 次循环

3. 实验过程

  • 提取患者外周血中的 DNA。

  • 配置 PCR 反应体系,确保所有试剂的准确配比。

  • 在 FQD-16A 上启动 PCR 扩增,实时监测扩增曲线。

  • 根据扩增曲线判断样本中是否存在 KRAS G12V 突变。

4. 结果分析

通过扩增曲线和熔解曲线的分析,成功检测到了 KRAS G12V 突变的患者样本。对照组中无突变的样本未显示任何扩增信号,而突变样本的扩增曲线明显早于对照组,表明突变基因的浓度较高。

  • 熔解曲线分析:突变样本显示了特异性的熔解峰,而对照组无显著峰值。

5. 优化与结论

FQD-16A 能够快速、准确地检测到 KRAS 基因的突变。优化引物设计、提高 PCR 反应的特异性是提高实验准确性的关键。


五、总结

博日 FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪在多个领域的成功应用展示了其强大的检测能力。从基因表达分析到病原体检测、基因突变分析,FQD-16A 提供了可靠的技术支持。通过不断优化实验设计、反应条件和数据分析方法,用户能够充分发挥该设备的性能,获得准确、可靠的实验数据。


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