博日实时荧光定量pcr仪FQD-16A操作规程
时间:2025-08-27

一、引言

博日 FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪是一款高效、精确的小型 PCR 仪器,广泛应用于基因表达分析、病原体检测、突变分析及定量 PCR 实验中。其高灵敏度的光学系统和精确的温控技术,使其成为实验室中不可或缺的重要工具。

为了确保实验的顺利进行,规范的操作规程至关重要。本规程详细介绍了从仪器开机到实验完成的各个步骤,并提供了常见问题的处理方法,以保证 FQD-16A 实验的高效性、稳定性和可靠性。


二、仪器开机与初始化

1. 仪器开机

  • 接通电源并打开仪器主机的电源开关。

  • 打开电脑端的软件界面,确保设备与计算机连接正常。

  • 设备开机后,屏幕显示仪器状态,进行自检,确保无故障提示。

2. 确认电源和温控

  • 确认电压稳定在 100–240V 之间,避免电源波动影响设备运行。

  • 在启动前,检查仪器的加热模块是否工作正常,温控是否精准。


三、实验前准备

1. 实验环境

  • 确保实验室温度保持在 18–30℃,湿度控制在 30–70% 之间。

  • 避免强光直射和强电磁干扰。保持实验台面整洁,避免杂物影响操作。

2. 样品和试剂

  • 选择合适的模板(如 DNA 或 cDNA)。若使用 RNA 样品,需提前进行反转录。

  • 使用高质量的引物,推荐长度为 18–24 bp,GC 含量 40–60%。

  • 选择兼容的 PCR 试剂盒,例如 SYBR Green 或 TaqMan 探针法试剂。

3. 耗材准备

  • 使用适配 FQD-16A 的 0.2 mL PCR 管或八联管。

  • 配备无 RNA/DNA 酶污染的移液器和枪头。

4. 环境检查

  • 确保实验室内有足够的空气流通,避免温度和湿度的急剧波动。

  • 检查反应模块、热盖和光学系统是否干净,避免灰尘或杂质影响实验结果。


四、试剂体系配置

1. 标准体系配置(以 20 μL 体系为例)

  • 2× Master Mix:10 μL

  • 上游引物(10 μM):0.4 μL

  • 下游引物(10 μM):0.4 μL

  • 模板 DNA/cDNA:1–2 μL

  • 高纯度水:补足至 20 μL

2. 体系配置注意事项

  • 试剂配置时应避免气泡产生。

  • 配制完成后,轻轻混匀并瞬时离心,确保反应均匀。

  • 配置过程中使用高质量无 RNA/DNA 酶水。

3. 阴性与阳性对照设置

  • 每次实验必须设置阴性对照(NTC),确保试剂和设备的洁净。

  • 根据需要设置阳性对照,以确保试剂的有效性和实验的可靠性。


五、仪器操作步骤

1. 上样操作

  • 打开加热模块盖板,确保反应管或八联管能够正确放入孔位。

  • 将配置好的 PCR 反应体系小心加入反应管中,确保管壁干净。

  • 关闭加热模块盖板,确保反应管与模块的紧密接触。

2. 程序设置

  • 在 FQD-16A 软件中设置实验程序。常见的设置包括:

    • 预变性:95℃,3 min

    • 扩增循环:95℃,10 秒;60℃,30 秒(荧光采集),共 40 次

    • 熔解曲线(如需要):65–95℃,每步 0.5℃,实时采集信号

  • 确保选择正确的荧光通道,通常 SYBR Green 选择 FAM 通道,TaqMan 探针根据探针标记选择通道。

3. 实验运行

  • 点击“启动”按钮,仪器会自动进入扩增阶段并进行实时荧光信号采集。

  • 程序完成后,仪器会自动进入熔解曲线分析阶段,实时显示荧光信号随温度变化的情况。


六、数据分析与解读

1. 扩增曲线

  • 阳性样品:应呈现典型的“S 型”扩增曲线,荧光信号随着循环次数的增加而上升,最终达到平台期。

  • 阴性对照:无荧光信号,确保实验环境没有污染。

2. 熔解曲线

  • 单一尖锐峰:表示扩增产物为特异性产物。

  • 多峰或宽峰:表示可能存在引物二聚体或非特异性产物。

3. Ct 值计算

  • 绝对定量:通过标准曲线计算样品中核酸的拷贝数。

  • 相对定量:采用 ΔCt 或 ΔΔCt 方法进行基因表达分析。

4. 数据导出

  • 实验结束后,可选择导出实验结果。支持 Excel、PDF 等多种格式,便于进一步分析与报告生成。


七、常见问题及解决方法

1. 无扩增信号

  • 原因:模板未加入或模板质量差,试剂失效。

  • 解决方法:检查模板是否正确加入,重新配置试剂体系。

2. Ct 值异常

  • 原因:模板浓度过低或过高,反应体系配制不当。

  • 解决方法:调整模板量,优化引物浓度。

3. 熔解曲线出现多峰

  • 原因:引物二聚体或非特异性扩增。

  • 解决方法:优化引物设计,检查 PCR 条件,避免引物二聚体。

4. 荧光信号过低

  • 原因:检测通道选择错误,染料或探针浓度不足。

  • 解决方法:确认通道选择正确,使用新鲜试剂。


八、仪器维护与保养

1. 日常维护

  • 每次实验后用无尘布擦拭仪器外壳,保持清洁。

  • 清洁光学窗口时避免刮伤,建议使用专用镜头布。

  • 检查反应模块表面是否有残留试剂,清洁时避免液体渗入模块。

2. 定期保养

  • 每月:检查 USB 接口和电源线是否损坏,清洁散热风扇。

  • 每年:进行设备的全面校准与维护,确保温控和光学系统的准确性。

3. 故障排查

  • 若出现设备异常或程序无法启动,尝试重新启动软件并检查连接。

  • 设备长时间无响应时,重启仪器,若问题依旧存在,请联系技术支持。


九、实验安全与注意事项

1. 操作规范

  • 实验过程中佩戴实验服、手套和防护眼镜,避免与试剂直接接触。

  • 样品与反应液应在规定区域进行操作,避免交叉污染。

2. 废弃物处理

  • 使用过的 PCR 管应高压灭菌后处理。

  • 废液应严格按实验室规定进行处理,避免污染环境。

3. 设备安全

  • 避免仪器过热,定期检查散热系统,保持通风良好。

  • 避免强烈电磁干扰,确保电源接地良好。


十、总结

博日 FQD-16A 实时荧光定量 PCR 仪具有高灵敏度、高精度操作简便等优点,是科研、医学、食品安全、农业和环境监测领域的重要工具。通过遵循本操作规程,实验人员能够有效配置试剂、操作设备、分析数据,从而确保实验结果的准确性与可靠性。

定期维护和科学管理将有效延长仪器的使用寿命,提升实验室工作效率,为科研及应用实验提供强有力的支持。


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