宏石荧光定量PCR仪SLAN-48P是一款中通量实时定量PCR检测平台,能够广泛应用于临床分子诊断、科学研究、食品与环境安全监测等场景。为了获得高质量的扩增结果和可靠的定量数据,合理的参数设置至关重要。无论是反应体系的体积、循环条件的设定,还是荧光通道的选择与数据阈值的调整,都直接决定了实验的灵敏度、特异性与重复性。本文将从整体到细节,系统阐述SLAN-48P的参数设置方法与注意事项。
科学合理:各项参数应符合PCR基本原理。
针对性强:不同检测目的(病毒检测、基因分型、基因表达分析)需要差异化设置。
兼顾灵敏度与特异性:确保低拷贝样品的检测能力,同时避免非特异性扩增。
可重复性:同类实验参数应保持一致,保证数据可比性。
可追溯性:所有参数需记录在案,以便复现与追踪。
常规体系为 20 μL,既能保证反应体系稳定,又能节约试剂。
对于特殊实验,可调整至15–25 μL,但需保持各反应孔一致。
DNA样品:1–100 ng。
RNA样品:需经反转录生成cDNA后使用,一般为1–5 μL。
病毒核酸:建议2–5 μL,以避免抑制效应。
引物浓度常设为0.2–0.5 μM。
探针浓度一般为0.1–0.25 μM。
若出现非特异性扩增或背景信号过高,可适当调整。
在临床检测与相对定量实验中需加入内参基因,如GAPDH或β-actin。
内参孔需独立标注,便于结果比对。
温度:95℃
时间:2–3分钟
作用:完全解链模板DNA,激活热启动酶。
每个循环通常包括三个步骤:
变性
温度:95℃
时间:10–15秒
作用:使双链DNA解链。
退火
温度:55–65℃(根据引物Tm值选择,通常比Tm低3–5℃)。
时间:20–30秒
作用:引物与模板结合。
延伸
温度:72℃(常规Taq酶)
时间:20–30秒(视产物长度而定,一般100 bp需10秒)。
常用40–45个循环。
样品量大或拷贝数低时,可适当增加循环数。
范围:65–95℃
升温速率:0.3–0.5℃/s
作用:判断扩增特异性,区分目标产物与非特异性扩增。
SLAN-48P一般配置4个通道:FAM、HEX/VIC、ROX、CY5。
FAM:常用于病毒检测与基因定量。
HEX/VIC:常作内参或第二靶标。
ROX:可作为参考染料或质控信号。
CY5:用于多重检测中的额外目标。
荧光信号采集一般设置在延伸阶段末端。
对于SYBR Green,可在延伸阶段实时采集,确保曲线平滑。
软件会自动生成阈值线,但需人工检查是否合理。
阈值线应位于扩增曲线上升前的指数期。
阴性对照不应出现超过阈值的信号。
有效Ct值一般在10–35之间。
大于38的Ct值需谨慎解读,可能为低水平污染或假阳性。
稀释梯度:至少设置5–7个稀释点。
R²≥0.99说明标准曲线线性良好。
扩增效率:90–110%为合理范围。
设置目标基因与内参基因。
选择校正样本作为参考组。
自动计算相对表达倍数。
单一峰值说明特异性好。
双峰或多峰需重新优化引物。
循环数设为40–42。
使用探针法,多重检测时合理分配通道。
设定阳性与阴性对照,Ct值差异清晰可辨。
退火温度需针对不同引物优化。
退火延伸时间适当延长,保证扩增效率。
ΔΔCt法需准确选择内参基因。
建议使用探针法,避免SYBR Green非特异性干扰。
熔解曲线需设定较小升温梯度,以便区分突变型与野生型。
可采用简化的参数设置,如统一退火温度和循环条件。
重点在于直观展示扩增曲线和熔解曲线。
阴性对照应无扩增曲线。
若出现信号需检查污染来源。
Ct值应稳定在预期范围。
若异常偏高或未扩增,说明试剂或体系存在问题。
内参Ct值应稳定,作为体系有效性依据。
多孔重复Ct值差异应小于0.5。
超出范围需排查移液误差。
预实验验证:新引物或探针需进行梯度退火优化。
模板稀释:避免过量模板抑制扩增。
时间调整:产物较长时延长延伸时间。
批量一致性:同一批次实验尽量保持一致的参数,避免偏差。
保存模板:常用参数可保存为模板文件,便于重复调用。
智能算法优化:自动推荐最佳退火温度与循环数。
云端数据库:基于实验数据的积累提供参数优化建议。
机器学习辅助:识别异常曲线并调整阈值线。
自动质控模块:对对照组Ct值偏差自动报警。
宏石荧光定量PCR仪SLAN-48P的参数设置涵盖反应体系、热循环程序、荧光检测、数据分析和质量控制等多个层面。合理的参数选择不仅能提高实验灵敏度和特异性,还能增强数据的稳定性与可比性。通过结合标准化设置与个性化优化,SLAN-48P能够满足不同检测任务的需求。在未来,随着智能化与自动化的发展,参数设置将更加便捷和精准,为科研与临床检测提供更高效的技术支持。
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