荧光定量 PCR(qPCR)是一种在 DNA 扩增过程中实时检测荧光信号的技术,能够在分子水平上对基因表达量、病原体载量、基因突变情况进行定性或定量分析。宏石 SLAN-48P 作为中通量实时荧光定量 PCR 仪器,支持 48 孔检测位点,适合中小型实验室常规检测和教学科研应用。
通过本实验教程,实验人员可系统掌握 SLAN-48P 的使用方法,包括:
熟悉荧光定量 PCR 的基本原理;
掌握反应体系的配置与对照设置;
学会正确操作 SLAN-48P 进行扩增检测;
能够独立完成结果分析与实验报告。
荧光定量 PCR 的核心是将荧光染料或探针引入 PCR 反应体系。随着 DNA 片段的指数级扩增,荧光信号与扩增产物量呈正相关。SLAN-48P 的光学模块可在每个循环的特定阶段采集荧光信号,通过软件分析生成扩增曲线、Ct 值和标准曲线,从而实现绝对或相对定量。
SYBR Green 法:利用荧光染料与双链 DNA 结合后发光,适合通用检测。
TaqMan 探针法:利用特异性探针水解释放荧光信号,特异性更强,适合定量检测。
熔解曲线分析:通过升温逐步解链,判断扩增产物的特异性。
48 孔 PCR 板或八联管
光学透明封板膜
无核酸酶水
一次性手套、口罩、实验服
PCR 预混液(含缓冲液、dNTP、酶)
特异性引物与探针
模板 DNA 或 RNA(RNA 需先逆转录为 cDNA)
阴性对照与阳性对照
梯度稀释标准品(用于标准曲线)
室温 18–30℃,相对湿度 40–70%
区域划分明确:试剂准备区、样品处理区、扩增区
计算体系用量
单个反应体系 20 μL 或 25 μL,根据实验设计确定。
总量需包含所有样品与对照,并额外预留 10%。
组分配置(以 20 μL 为例):
预混液:10 μL
引物与探针:各 0.5–1 μL
模板:2 μL
无核酸酶水:补足至 20 μL
注意事项
配置时避免气泡,体系需轻轻混匀。
每次移液更换枪头。
对照必须同时设置:NTC(无模板对照)、阳性对照、标准品。
将反应体系分装至 48 孔板或八联管中。
使用透明光学封膜密封,确保无气泡残留。
短暂离心,确保液滴集中在管底。
打开 SLAN-48P 热盖,将反应板放置于样品槽内,确认方向正确并紧密贴合。
启动 SLAN-48P 软件,新建实验项目。
输入实验名称、操作者姓名与日期。
设定热循环程序:
预变性:95℃ 3 分钟
变性:95℃ 15 秒
退火/延伸:60℃ 30 秒(采集荧光)
循环 40–45 次
选择荧光通道(如 FAM、HEX、ROX、Cy5)。
若需熔解曲线,设置 65–95℃,升温速率 0.2℃/s。
保存并检查参数无误,启动运行。
SLAN-48P 将自动进行热循环与荧光采集。
实验过程中可在电脑界面实时查看扩增曲线。
实验总时长约 1.5–2 小时。
检查对照情况:阴性对照无扩增曲线,阳性对照曲线应在合理范围。
样品 Ct 值与对照比较,判断是否为阳性。
由标准品生成的 Ct 值绘制曲线,R² ≥ 0.99。
扩增效率在 90–110% 范围为合格。
单一峰代表扩增产物特异性好。
多峰提示可能存在非特异性扩增或引物二聚体。
绝对定量:利用标准曲线计算样本浓度。
相对定量:采用 ΔΔCt 法,以内参基因(如 GAPDH)为参考。
实验报告应包含以下内容:
实验目的与样品信息;
反应体系与参数设置表;
扩增曲线与 Ct 值表格;
标准曲线与效率指标;
熔解曲线图;
结果分析与结论;
异常情况说明与处理。
防污染
严格分区操作,避免气溶胶污染。
配置体系使用滤芯枪头,操作轻柔。
温控与光学
样品放置时确保 PCR 板与模块紧密贴合。
光学窗口保持清洁,避免影响信号采集。
对照设置
阴性对照是实验质量监控的关键。
标准品浓度必须准确稀释,避免曲线偏差。
无扩增信号
检查模板是否降解。
确认是否选择正确的荧光通道。
Ct 值过高
模板量过低或提取不完全。
退火温度过高,需优化。
熔解曲线多峰
引物二聚体,应调整引物设计。
优化退火温度。
阴性对照扩增
存在气溶胶污染,应更换试剂并重新实验。
日常维护
实验后用无水乙醇清洁热循环模块。
光学窗口如有灰尘或指纹,用镜头纸轻拭。
定期保养
每 3–6 个月进行温度校准。
每年进行光学校准。
检查并更新软件至最新版本。
存放要求
长期停机需关闭电源并覆盖防尘罩。
存放环境保持干燥、通风。
SLAN-48P 实验教程系统介绍了荧光定量 PCR 的操作步骤,从试剂准备、体系配置、仪器运行到数据分析和报告整理,构建了完整的实验流程。
通过严格遵循本教程,实验人员不仅能熟练掌握 SLAN-48P 的操作,还能有效避免常见问题,提高数据的可靠性与重复性。无论在临床检测还是基础科研中,SLAN-48P 都是一款高效、稳定的工具,能够为实验提供坚实的技术支撑。
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