荧光定量PCR(Real-time PCR, qPCR)作为一种高灵敏度、高特异性的核酸检测方法,已被广泛应用于分子生物学研究、临床检测、遗传分析及药物研发。宏石SLAN-48P作为中等通量的实时荧光定量PCR仪,兼具灵活性、可靠性与操作简便等优势,特别适合中小型实验室和教学应用。
为了确保实验结果的准确性与可重复性,建立科学、完整的实验规程十分必要。本规程涵盖从实验准备、样品配置、仪器操作、数据分析到质量控制与安全注意事项的全过程,适用于科研实验和临床教学的日常使用。
掌握SLAN-48P的标准操作方法;
学会正确设置实验方案并执行检测任务;
熟悉扩增曲线与Ct值的获取与解读;
能够生成和导出标准化实验报告;
建立符合实验室管理要求的规范化流程。
宏石荧光定量PCR仪SLAN-48P;
微量移液器及无RNA/DNA污染吸头;
48孔反应板或八联管;
台式离心机、冰盒;
计算机及配套软件系统。
PCR反应缓冲液与聚合酶;
dNTP混合液;
荧光染料(SYBR Green)或特异性探针(TaqMan);
引物对;
模板DNA/cDNA;
阴性对照(无模板对照NTC)与阳性对照。
实验室区域分区:样品准备区、反应配置区、扩增检测区;
保持环境洁净,避免RNA/DNA污染;
温度20–25℃,相对湿度40–60%。
根据实验设计配制反应液:
反应缓冲液、dNTP、引物、荧光染料/探针;
加入模板或对照;
补足体积至设定值(通常20 μL或25 μL)。
使用低吸附管/板分装,避免移液误差。
设置阴性与阳性对照,确保结果可靠。
将反应板或八联管密封,避免蒸发与污染;
使用离心机短暂离心,去除液体气泡;
检查反应板条码或手动录入样本编号;
将反应板放置于样品仓中,关闭仓盖。
打开电源与软件;
新建实验任务,填写实验名称、编号与操作者信息;
在板型界面输入样本信息,对应位置编号;
设置循环参数:
初始变性温度与时间;
退火温度与延伸时间;
循环次数(通常35–45循环)。
选择检测通道(FAM、HEX、ROX等);
保存方案并启动实验。
实验运行过程中,软件显示扩增曲线;
观察曲线是否呈现S型趋势;
检查阴性对照是否无信号,阳性对照是否有效。
软件自动计算各样本Ct值;
若Ct值异常偏高或无值,需结合曲线重新判定。
标准曲线呈S型:基线期—指数期—平台期;
曲线异常:提前上升可能为污染,无扩增可能为反应失败。
单峰表示特异性扩增;
多峰或拖尾提示非特异性产物或引物二聚体。
绝对定量:基于标准曲线计算拷贝数;
相对定量:ΔΔCt方法比较基因表达水平。
软件自动生成报告,包括实验条件、Ct值表、扩增曲线、熔解曲线;
可导出Excel、PDF或Word文件,用于科研或临床提交。
阴性对照无扩增;
阳性对照Ct值在合理范围。
同一样本重复孔Ct值差异应小于0.5;
扩增曲线形态一致。
结合熔解曲线和标准曲线,排除假阳性或假阴性。
实验记录完整,包括日期、编号、操作者;
所有文件定期备份,符合实验室信息管理规范。
无扩增信号
检查模板质量或体系配置;
确认荧光通道设置正确。
Ct值差异大
移液误差或反应体系不均匀;
样本浓度差异过大。
熔解曲线异常
调整退火温度;
优化引物设计。
曲线提前上升
可能存在污染,应更换耗材并检查环境。
严格区分样本处理区和扩增区,避免气溶胶污染;
操作过程中佩戴手套、口罩,遵守生物安全规范;
使用一次性耗材,避免重复使用;
实验结束后,清洁样品仓和实验台;
废弃物按照实验室生物安全规定处理。
培训要求
操作人员需经过专门培训,熟悉PCR原理与SLAN-48P操作;
定期组织考核,保证操作熟练度。
实验室管理
每次实验后记录在案;
定期检查设备状态与校准情况;
建立数据管理制度,确保可追溯性。
宏石荧光定量PCR仪SLAN-48P实验规程的制定与执行,保证了实验的规范性、准确性与安全性。通过标准化的操作步骤、科学的数据分析方法与严格的质量控制,用户能够获得稳定可靠的结果。该规程不仅适用于科研实验,也满足临床检测和教学培训的要求。
在分子检测技术不断发展的背景下,SLAN-48P凭借其合理的通量、易用的软件和稳定的性能,将继续在医学检验与科研探索中发挥重要作用。实验规程的严格执行,将为实验室管理、科研创新与临床诊断提供坚实保障。
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