
实时荧光定量PCR仪 AQS8830-16 操作步骤
实时荧光定量PCR仪 AQS8830-16 操作步骤
以下是 AQS8830-16 实时荧光定量PCR仪 的详细操作步骤,包括实验准备、仪器设置、运行实验和结果分析。确保每一步操作都严格按照标准流程进行,以确保实验结果的准确性和可靠性。
一、实验前准备
环境检查
确保实验室环境干净整洁,防止样品污染。
实验分区明确,核酸提取、反应体系准备和PCR操作区域分开。
样品制备
提取目标核酸(DNA或RNA),确保其纯度和浓度符合实验要求。
使用高质量的反应试剂(如荧光探针、引物、酶、dNTPs)。
反应体系配置
样品模板:目标DNA/RNA。
引物对:特异性扩增目标序列。
荧光探针或染料(如SYBR Green)。
PCR反应缓冲液和DNA聚合酶。
按实验设计将样品和试剂混合,通常包括:
配置完成后将反应混合液分装到微孔板或反应管中,确保体积一致。
反应管/板准备
将微孔板或反应管密封,避免样品蒸发。
检查密封膜或盖是否牢固,防止荧光信号干扰。
二、仪器准备
仪器开机
打开 AQS8830-16 的电源,等待仪器完成自检。
确保仪器运行正常,无错误提示。
软件启动
启动仪器配套软件,在主界面选择“新建实验”或打开既有实验模板。
实验设置
PCR程序:
荧光采集:
退火:50-65°C(根据引物设计确定),30秒。
延伸:72°C,30秒至1分钟。
初始变性:95°C,30秒至2分钟。
退火和延伸循环:通常40个循环。
如果需要熔解曲线分析,添加熔解曲线阶段。
设置目标通道(如 FAM、HEX 等)采集荧光信号。
确保每个循环的退火/延伸阶段采集荧光信号。
在软件中输入实验参数:
梯度功能设置(如需要)
如果需要优化退火温度,可在退火阶段设置梯度范围。
三、运行实验
样品装载
将准备好的微孔板或反应管放置在仪器的样品槽中。
确保板位或管位安装稳固,并按照软件提示正确摆放。
启动实验
点击“开始实验”按钮,仪器将按照设置的程序自动运行。
实验过程中,软件会实时显示荧光信号变化并绘制扩增曲线。
确认曲线是否正常,是否出现异常信号(如无扩增、信号过低)。
四、实验完成与数据分析
结果查看
扩增曲线:判断扩增效率和特异性。
Ct值:提取荧光信号达到设定阈值时的循环数。
标准曲线(如有):用于绝对定量分析。
实验完成后,软件将自动生成扩增曲线、Ct值和标准曲线。
数据分析包括:
熔解曲线分析
如果实验设计包含熔解曲线阶段,查看解链温度曲线,确认扩增特异性。
熔解峰过多可能提示非特异性扩增或引物二聚体。
保存数据
将实验数据保存至本地或导出为通用格式(如 Excel、PDF)。
备份数据以便后续分析。
实验完成后,取出微孔板或反应管,按照实验室生物安全规范处理废弃物。
五、仪器维护与关机
清洁
清洁样品槽,去除可能的样品残留或冷凝水。
清理实验台,确保下一次实验的洁净操作环境。
关机
退出实验软件并关闭仪器电源。
如果长时间不使用仪器,断开电源以保护设备。
维护
定期检查光源、荧光探测器和温控模块是否正常。
根据使用说明书定期校准仪器,确保结果准确。
六、注意事项
样品准备
避免样品污染,使用无核酸酶耗材和高纯度试剂。
确保模板浓度适宜,过高或过低会影响扩增效率。
密封性
确保反应管或微孔板密封良好,避免蒸发影响结果。
参数设置
PCR程序需根据实验需求精准设定,过长或过短可能影响结果。
定期校准温控和荧光检测系统,避免数据偏差。
妥善保存实验数据,确保可追溯性。
七、总结
AQS8830-16 实时荧光定量PCR仪以其高精度、快速和多功能性广泛应用于核酸检测和基因研究领域。通过正确操作、合理设置实验参数以及规范维护设备,可以确保实验结果的可靠性和重复性,为科研和临床提供强有力的数据支持。
